1.1 感染前一天293T或293TN消化细胞,铺24孔板,混匀,将细胞置于5%CO2,37℃恒温培养箱培养。
要求:
① 慢病毒感染,感染前融合度至30%左右
② 腺病毒感染,感染前融合度至80%左右
③ 腺相关病毒感染,感染前融合度至50%左右
1.3 准备待感染病毒备用,并计算相应用量(病毒量=细胞量*MOI/滴度)
1.4 标记不同病毒孔板位置,将病毒按照孔板位置排序
2.1 根据培养基体系,加入polybrene感染试剂,终浓度5μg/ml(腺病毒感染不加polybrene,感染前需5%FBS培养基换液)
2.2 病毒使用混合均匀,将相应体积病毒加入到孔板中(枪头没入液面以下,不可触碰到细胞,移液枪多吹打几次保证枪头内无残留病毒),前后摇动培养板使其均匀分布,置于5%CO2,37℃恒温培养箱培养
2.3 感染12-20小时后,换成新鲜完全培养基进行培养(腺病毒感染根据细胞状态确认是否换液,对状态无影响无需换液,有影响换成5%FBS培养基)
2.5 感染72小时后在荧光显微镜下观察细胞感染效率,拍照并记录细胞状态和感染效率(慢病毒感染72小时,腺病毒感染及腺相关病毒感染48小时观察)
3.1 不同病毒感染细胞铺板量及MOI
① 慢病毒感染,感染前融合度至30%左右 MOI 10
② 腺病毒感染,感染前融合度至80%左右 MOI 100
③ 腺相关病毒感染,感染前融合度至50%左右 MOI 1000000
3.2 不同病毒感染polyberene终浓度
① 慢病毒感染,5μg/ml
② 腺病毒感染 ,不加polybrene
③ 腺相关病毒感染,5μg/ml
3.3 膜蛋白感染体系
① 293T或293TN,2个6cm皿;
② 其他细胞,2个10cm皿
5.2 感染后细胞状态良好,感染效率80%以上,密度80%以上